PRÁCTICA 2: OBSERVACIÓN DE LOS PROCESOS OSMÓTICOS

-MATERIALES: 

La epidermis de la cebolla
Agua destilada (laboratorio)
Agua del grifo
Agua con sal (disolución saturada)
Portas
Cubres
Tijeras
Pinzas
Cuentagotas
Vaso de precipitados
Papel secante
Microscopio

METODOLOGÍA: 

-Agua destilada: 
1º Cortamos un trozo de epidermis de cebolla.
2º La colocamos sobre el porta.
3º Echamos con el cuentagotas agua destilada.
4º La ponemos en el porta para poder sacarla, a continuación la podemos observar en el microscopio.
-Agua del grifo: 
1º Tomamos otra muestra de epidermis.
2º Volvemos a colocarla en un porta y le echamos agua del grifo.
3º Colocamos el cubre, lo secamos y observamos.
-Agua con sal: 
1º Tomamos otra muestra diferente de epidermis.
2º Repetimos el proceso anterior.

CONCLUSIONES:

En la observación de cebolla con el agua del grifo podemos ver la diferencia entre la pared celular y la membrana celular
En la observación de cebolla con el agua con sal podemos observar como se deshidrata la célula al intentarse equilibrar con la sustancia externa
En la observación de cebolla con el agua destilada podemos observar que el medio externo hipo tónico se junta con la pared celular y la membrana
Como hemos podido ver las células siempre se intentan equilibrar mediante los procesos osmóticos.

PRÁCTICA 1: OBSERVACIÓN DE LOS DISTINTOS TIPOS DE CÉLULAS

-MATERIALES:

Microscopio

Papel secante

Portas

Cubres

Alcohol metílico

Mechero

Azul de metileno

Pinzas

Agua

Células de la cavidad bucal

Epidermis de cebolla

Yogur 

Palillos

-METODOLOGÍA:

Células de la cavidad bucal:

Cogemos un palillo y frotamos con él en el carillo.

Sacamos el palillo, a continuación, por donde hemos frotado, lo ponemos en un porta.

Echamos una gota de agua y lo mezclamos. 

Cogemos el porta con una pinza y  una vez encendido el mechero, lo ponemos al fuego hasta que no quede resto de agua y así se fijen las células. (sin que se caliente mucho)

Añadimos azul de metileno para teñir las células y esperamos 5 minutos.

Retiramos el exceso de tinte con agua y le ponemos el cubre para observarlo al microscopio.

Epidermis de cebolla:

Cortamos un trozo pequeño de la epidermis de la cebolla.

Colocamos la muestra en el porta y añadimos azul de metileno (volvemos a esperar 5 minutos).

Retiramos el exceso con agua y le colocamos el cubre.

Bacterias lácticas:

Introducimos un palillo en el yogur. 

Mezclamos la muestra de yogur con una gota de agua.

Procedemos nuevamente a fijarla.

Tinción (esperar 5 minutos)

Retiramos el exceso con agua y colocamos el cubre 

CONCLUSIONES: 

Las células tienen diferentes tamaños. 

PRÁCTICA 5: OBSERVACIÓN DE CÉLULAS EN MITOSIS.

-MATERIALES: 

Orceína A 

Orceína B

Meristemo apical de una cebolla

Vidrio de reloj

Mechero

Alcohol metílico

Pinzas

Papel secante

Microscopio

Portas

Cubres

-METODOLOGÍA: 

1º Cortar 1 cm aproximadamente de meristemo de la raíz 

2º Bañarlo en orceina A

3º Ponerlo al fuego durante 8 minutos (sin que se queme) 

4º Coger el meristemo y ponerlo en un porta

5º Echar una gota de orceina B

6º Esperar un minuto y medio ó dos aproximadamente

7º Lavar la preparación para quitar la orceína sobrante (con mucho cuidado para que no perder el meristemo) 

¡Ya está todo listo para observar al microscopio!

-CONCLUSIONES: 

El fin de esta práctica era ver las células de la cebolla en mitosis.

 Para ello pusimos el culo de la cebolla en agua durante una semana. 

Nosotros no conseguimos ver las células en mitosis, después de intentarlo varias veces. 

Por desgracia es algo difícil y que no siempre se ve, nosotros no tuvimos suerte. 

Lo que nosotros deberíamos de haber visto es lo siguiente; 

PRÁCTICA 4: HIDRÓLISIS DEL ALMIDÓN

-MATERIALES:

Reactivo de lugol
Rotulador
Pipeta
Pipeteador
Fehling A
Fehling B
Solución de almidón
Agua
Gradilla
Tubos de ensayo
Ácido clorhídrico

-METODOLOGÍA:

Echamos en el tubo de ensayo 5ml de almidón +3 gotas de lugol y le damos calor 2 min.
Echamos en el tubo de ensayo 5ml de agua + 3 gotas de lugol  y le damos calor 2 min
Echamos en el tubo de ensayo 5 mil de almidón + feHling y calentamos
Echamos en el tubo de ensayo 5 ml de almidón + 5 gotas de HCl  (esperar 10 minutos para que actué) Reacción de fehling( 2ml de FA y 2ml de FB)  y a continuación lo calentamos
Masticamos el pan y cada 3 , 6 y 9 minutos echamos un poco en el tubo de ensayo y echamos 2ml de Fehling A y 2 ml de Fehling B , y por ultimo calentamos.

-CONCLUSIONES:

Primero sale un color morado y después de calentarlo sale blanco amarillento.
Después de todos los procedimientos sale un color azul  del fehling A aquí actúan las cadenas y en el proceso se libera glucosa.
En el tubo de ensayo debería haber quedado un color rojo teja, pero nosotras lo hemos preparado mal, echamos el almidón en la boca en esta preparación
A los 3 min de estar masticando y hacer la preparación, sale de color rojo .
A los 6 minutos sale un rojo mas oscuro.
A los 9 minutos no nos salió , ya que el error que cometimos anteriormente tenía que ver con este, echamos este pan masticado en la disolución de almidón + fehling. (hubo una equivocación porque no estaba bien marcado con el marcador de vidrio)

PRÁCTICA 3: ANÁLISIS BIOQUÍMICO DE LOS PRINCIPIOS INMEDIATOS DE LA LECHE.

-MATERIALES:

Mechero
Pinzas
Pipeta
Tubos de ensayo
Pipeteador automático
Gradilla
Marcador de vidrio
Leche
Agua
Alcohol metílico
Papel secante
Cuentagotas
Reactivo de Fehling A
Reactivo de Fehling B
Reactivo de Sudan III
Reactivo de Biuret

-METODOLOGÍA:

REACCIÓN DE FEHLING: 

AGUA:

1º Con una pipeta cogemos 5 ml de agua y lo echamos en un tubo de ensayo.

2º Añadimos en el tubo de ensayo 2ml de Fehling A y 2 ml de Fehling B.

3º Lo agitamos, si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.

4º Por último lo calentamos al fuego. 

LECHE:

1º Con una pipeta cogemos 5 ml de leche y lo echamos en un tubo de ensayo

2º Añadimos en el tubo de ensayo 2ml de Fehling A y 2 ml de Fehling B

3º Lo agitamos, si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.

4º Por ultimo lo calentamos al fuego. 

REACCIÓN DE BIURET: 

1º Con una pipeta cogemos 5 ml de leche o agua y lo echamos en un tubo de ensayo.

2º Añadimos en el tubo de ensayo 2ml de Fehling A.

Lo agitamos, si esta un poco lleno le ponemos en la parte de arriba un poco de papel secante.

AGUA DESTILADA: 

1º Con una pipeta cogemos 5 ml de leche y lo echamos en un tubo de ensayo.

2º Añadimos en el tubo de ensayo 3 gotas de Sudán III. 

En está reacción no hemos podido ver el resultado. (no nos ha salido) 

-CONCLUSIONES: 

Reacción de Fehling: 

En el agua se puede observar como el color es un azul oscuro, ya que da negativo por no tener azucares reductores. En cambio en la leche, después de haberla calentado, si da positivo (marrón) ya que detecta los monosacáridos (glucosa y galactosa) y disacáridos (lactosa) de la leche.

Reacción de Biuret: Volvemos a ver como en el agua da negativo y en la leche sí, ya que es un alimento que aporta proteínas. 

Reacción de Sudan III: El agua vuelve a dar negativo, ya que no contiene grasas (dorado) y la leche sí (marrón clarito).